透明魚骨骼標本之製作

方法一(置作時間較長):

1. 將魚標本置於5-10%之甲醛溶液2-3天或更久，但亦可直接進入第二部驟。
2. 以蒸餾水滴洗2-3天，之後清理表面組織（鱗片）及內臟組織。
3. 直接放置於混合溶液(10mg alcian blue 8NG + 80ml 95% alcohol+20ml冰醋酸)24-48小時。
4. 用95 % 、90% 、40%、 15%之alcohol處理各2-3小時，各濃度連續重複兩次，直至標本沉下。
5. 置於蒸餾水2-3小時，連續重複兩次直到標本下沉。
6. 放置於酵素溶液中(30ml飽和硼酸鈉溶液+70ml蒸餾水+1g trypsin)，但每隔2-3天溶液呈淺藍色時,需更換溶液,直至骨骼清楚看見，同時表層肌肉無藍色存在  P.S.:此步驟可花費2-3週的時間。
7. 將溶液換成0.5%之KOH溶液，每隔1-2天更換溶液一次，直到魚體體色逐漸脫落。
8. 更換新的KOH溶液，並加數滴alizarin red S.(alizarin red:冰醋酸:蒸餾=1:2:12)，依標本大小而染色時間不同，直至骨骼完全染紅為止。
9. 依次轉換KOH-甘油溶液(比例3:1，1:1，1:3)直到純甘油，在最初之KOH-甘油溶液中每100ml可加3-4滴3%之雙氧水。
10. 將標本置於純甘油中保存,必要時加thymal來防霉防菌。

方法二:簡易製作法(只染硬骨"RED"，不染軟骨"BLUE")

1. 同上。
2. 同上。
3. 將標本置於2-4%KOH中,每天更換KOH直至可見到脊椎骨。
4. 換KOH溶液並加alizarin red S，同<8>。
5. 更新KOH溶液，使表層被染成紅色部分消失。
6. 依次更換20% 、30%、 50%、 60% 、70% 、80% 、90% 、95%、 100% 之甘油。
7. 同<10>。

使用藥物及功能:

1. 甲醛(福馬林):脂化凝固。
2. ALCOHOL(酒精):脫水脫脂。
3. Alcianblue:染軟骨。
4. 冰醋酸:溶解Alcianblue。
5. Trypsin(胰蛋白酶):將protein切成小片段。 
6. 硼酸鈉:同上。
7. KOH:使protein膨脹透明、脫色。
8. Alizarin RedS :染硬骨。
9. 甘油:使肌肉組織透明及保存。
10. THYMAL:防腐。